Caxumba IgM
Definição: Anticorpo da classe das imunoglobulinas M (IgM), produzido pelo organismo após uma infecção causada pelo vírus da caxumba.
Sinônimos: Anticorpo IgM - Caxumba; Sorologia IgM - Caxumba; Caxumba Imunoglobulina M; Caxumba, Anticorpos IgM; Caxumba IgM Ab; Anticorpos IgM Anticaxumba; Caxumba IgM Sérica; Caxumba IgM - Sangue.
A caxumba é uma doença infectocontagiosa autolimitada, causada por um vírus de material genético do tipo ácido ribonucleico (RNA), da família
Paramyxoviridae
.
A doença pode ser assintomática em cerca de 30% dos casos, no entanto, nos quadros sintomáticos, ela pode cursar com febre alta, parotidite, fadiga, disfagia. Nos casos mais graves, pode evoluir, por exemplo, com orquite/oforite, surdez, encefalite e meningite.
Pela imunização eficaz contra essa doença, sua incidência diminuiu sensivelmente nas últimas décadas.
Os anticorpos do tipo imunoglobulina M (IgM)
anticaxumba podem ser detectados já na primeira semana da infecção primária, sendo o período de 7 a 10 dias após o início dos sintomas o melhor momento para a coleta do sangue.
Após esse período, os títulos dos anticorpos IgM vão decaindo progressivamente, até chegar a níveis indetectáveis em prazo de 1 a 3 meses.
Já os anticorpos da classe das imunoglobulinas G (IgG)
contra a caxumba surgem logo após detecção dos IgM e permanecem detectáveis em níveis protetores por um tempo indefinido.
Recém-nascidos de mães previamente vacinadas ou infectadas apresentam níveis protetores de IgG
materna (são anticorpos capazes de atravessar a barreira placentária) até, aproximadamente, os 6 meses de idade.
Os anticorpos do tipo IgG , o isolamento viral em cultura de células e a detecção do material genético do vírus (RT-PCR) também estão disponíveis para o auxílio diagnóstico dessa infecção.
-
Indicações:
- Auxiliar no diagnóstico de infecção aguda ou recente;
- Diagnóstico diferencial de outras paramixoviroses.
Como solicitar:
Caxumba IgM.
- Orientações ao paciente: Não é necessário nenhum preparo específico;
-
Tubo para soro (tampa vermelha/amarela). Aguardar a completa retração do coágulo, centrifugar o tubo que contém a amostra por 15 minutos, mantendo-a sob refrigeração (2 a 8°C);
- Material: Sangue;
- Volume recomendável: 1 mL.
Figura 1.
Tubo para soro - tampa vermelha -
Ilustração:
Caio Lima.
Figura 2.
Tubo para soro - tampa amarela -
Ilustração:
Caio Lima.
Não reagente.
Observação!
Os pontos de corte dos títulos de anticorpos anticaxumba IgM podem variar de acordo com o Laboratório Clínico e a metodologia utilizada.
Hemólise e/ou lipemia acentuadas, além de amostras que foram inativadas pelo calor, podem promover alterações nos resultados.
Resultados falso-negativos podem ocorrer se a coleta for realizada muito precocemente (janela imunológica). Dessa forma, um resultado negativo não exclui a possibilidade de uma infecção primária aguda.
Pode haver reações cruzadas com outras viroses da família
Paramyxoviridae
, embora incomuns, acarretando resultados falso-positivos.
Os kits diagnósticos e métodos sorológicos para a detecção de anticorpos anticaxumba apresentam sensibilidades e especificidades variáveis.
Seus resultados devem ser sempre correlacionados com história clínica, sintomas e outros laudos de exames complementares.
Aumentos transitórios de IgM podem ocorrer no período pós-vacinal para caxumba.
Resultados falso-positivos podem ser encontrados na gravidez e em infecções causadas pelo Parvovírus B19.
- Reagente: Infecção aguda ou recente; pós-vacinação (transitoriamente em baixos títulos).
-
Não reagente:
Indivíduos sem contato prévio; imunização; infecção passada; coleta muito precoce (janela imunológica).
Autoria principal: Pedro Serrão Morales (Patologia Clínica e Medicina Laboratorial).
Filardo TD, Masters NB, Leung J, et al. Appropriateness of immunoglobulin M testing for measles, mumps, and rubella. Am J Prev Med. 2024; 67(6):973-7.
Bennett JE, Dolin R, Blaser MJ, eds. Mandell, Douglas, and Bennett's principles and practice of infectious diseases. 9th ed. Philadelphia, PA: Elsevier; 2020.
Huang TR, Wang CC. Parvovirus B19 infection implicated in a false-positive IgM assay for mumps. Pediatr Neonatol. 2020; 61(6):669-70.
Moghe CS, Goel P, Singh J, et al. Mumps outbreak investigation in Jaisalmer, Rajasthan, India, June-September 2016. J Med Virol. 2019; 91(3):347-50.
Kanaan S. Laboratório com interpretações clínicas. Rio de Janeiro, RJ: Atheneu; 2019.
Nunn A, Masud S, Krajden M, et al. Diagnostic yield oflaboratory methods and value of viral genotyping during an outbreak of mumps in a partially vaccinated population in British Columbia, Canada. J Clin Microbiol. 2018; 56(5):e01954-17.
McPherson RA, Pincus MR, eds. Henry's clinical diagnosis and management by laboratory methods. 23rd ed. St. Louis, MO: Elsevier; 2017.
Hviid A, Rubin S, Muhlemann K. Mumps. Lancet. 2008; 371(9616):932-44.
Jacobs DS, DeMott WR, Oxley DK, eds. Jacobs & DeMott laboratory test handbook with key word index. 5th ed. Hudson, OH: Lexi-Comp Inc.; 2001.
Storch GA. Essentials of diagnostic virology. Philadelphia, PA: Churchill Livingstone; 2000.
Harmsen T, Jongerius MC, van der Zwan CW, et al. Comparison of a neutralization enzyme immunoassay and an enzyme-linked immunosorbent assay for evaluation of immune status of children vaccinated for mumps. J Clin Microbiol. 1992; 30(8):2139-44.