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Definição: Clostridioides (anteriormente Clostridium ) difficile , é um b acilo anaeróbio, gram-positivo, principal agente etiológico da diarreia induzida por antibióticos e da colite pseudomembranosa, sendo considerada a causa mais importante de diarreia nosocomial em adultos.
Sinônimos:
Toxina A e B -
Clostridium difficile
(imunoensaio); Toxina A e B -
C. difficile
; Pesquisa das toxinas A e B -
C. difficile
; Toxina A (enterotóxica) e toxina B (citotóxica) -
Clostridium difficile
;
Clostridioides difficile
-
Toxina A e B - Fezes; Pesquisa de Toxina A e B fecal para
C. difficile
.
A colite pseudomembranosa atribuída a
C. difficile
é causada, principalmente, pelo uso de antibióticos (ex.: Cefalosporinas, Penicilinas, Clindamicina).
Sua patogenia está relacionada com a destruição da flora bacteriana colônica, classicamente após administração de antibióticos, aliada à exposição de cepas toxicogênicas de
C. difficile
.
As cepas toxicogênicas de
C. difficile,
usualmente, produzem uma ou duas toxinas, que podem ser detectadas diretamente nas fezes: toxina A (enterotóxica) e/ou toxina B (citotóxica).
As toxinas A e B levam a um aumento da permeabilidade vascular, induzindo a produção de interleucinas e fator de necrose tumoral-alfa (TNF-alfa), levando a uma resposta inflamatória e a formação de pseudomembranas.
Os sinais e sintomas podem variar desde um quadro moderado de diarreia aquosa, dor abdominal, febre, até quadros graves e potencialmente fatais de perfuração intestinal e peritonite.
O imunoensaio utilizado para a detecção das toxinas A e B de
C. difficile
é tecnicamente simples, rápido, e apresenta boa especificidade (95-100%), embora tenha relativa baixa sensibilidade (65-85%), em comparação ao ensaio de citotoxina.
Como solicitar:
Clostridioides difficile -
Toxina A e B - Fezes.
Frasco de coleta próprio para fezes com tampa.
Ilustração:
Caio Lima
Negativos.
A pesquisa das toxinas A e B não deve ser utilizada para o
screening
de pacientes hospitalizados sem sintomas gastrointestinais.
Uma proporção relativamente alta de resultados falso-negativos pode ocorrer, já que é necessária uma quantidade considerável de toxinas nas fezes para o ensaio detectá-las.
Em alguns casos, múltiplas coletas são necessárias para confirmação diagnóstica.
Nem todas as cepas de
C. difficile
são toxicogênicas, e, mesmo as que são, se em baixas concentrações, podem não desencadear a doença.
Muitos pacientes com resultados positivos podem permanecer assintomáticos no decorrer de toda a internação.
Técnicas moleculares
, citotóxicas e de cultura
estão disponíveis para o auxílio diagnóstico, apresentando melhor acurácia diagnóstica.
Sua sensibilidade pode variar de acordo com o kit diagnóstico utilizado.
Resultados discordantes entre a pesquisa do antígeno GDH
e a das toxinas A e B devem ser confirmadas com um outro ensaio (ex.: molecular
).
Em crianças menores que 3 anos, a pesquisa para as toxinas A e B pode não distinguir, acuradamente, a infecção por C. difficile da colonização.
Autoria principal: Pedro Serrão Morales (Patologia Clínica e Medicina Laboratorial).
Yunita B, Fauzi A. Current Diagnostic and Treatment Approach of Clostridioides difficile Infection. Acta Med Indones. 2023; 55(2):231-238.
Sandora TJ, Williams DN, Daugherty K, et al. Stool Toxin Concentration Does Not Distinguish Clostridioides difficile Infection from Colonization in Children Less Than 3 Years of Age. J Pediatric Infect Dis Soc. 2022; 11(10):454-458.
Carroll KC, Mizusawa M. Laboratory Tests for the Diagnosis of Clostridium difficile. Clin Colon Rectal Surg. 2020; 33(2):7 3-81.
Kanaan S. Laboratório com interpretações clínicas. 1a ed. Rio de Janeiro: Atheneu, 2019.
McDonald LC, Gerding DN, Johnson S, et al. Clinical Practice Guidelines for Clostridium difficile Infection in Adults and Children: 2017 Update by the Infectious Diseases Society of America (IDSA) and Society for Healthcare Epidemiology of America (SHEA). Clin Infect Dis. 2018; 66(7):e1-e48.
McPherson RA, Pincus MR. Henry's clinical diagnosis and management by laboratory methods. 23rd ed. St. Louis: Elsevier, 2017.
Bagdasarian N, Rao K, Malani PN. Diagnosis and treatment of Clostridium difficile in adults: a systematic review. JAMA. 2015; 313(4):398-408.
Surawicz CM, Brandt LJ, Binion DG, et al. Guidelines for diagnosis, treatment, and prevention of Clostridium difficile infections, Am J Gastroenterol. 2013; 108:478-498.
Planche TD, Davies KA, Coen PG, et al. Differences in outcome according to Clostridium difficile testing method: a prospective multicentre diagnostic validation study of C difficile infection. Lancet Infect Dis. 2013; 13(11):936-945.
Swindells J, Brenwald N, Reading N, et al. Evaluation of diagnostic tests for Clostridium difficile infection. J Clin Microbiol. 2010; 48(2):606-608.
Aichinger E, Schleck CD, Harmsen WS, et al. Nonutility of repeat laboratory testing for detection of Clostridium difficile by use of PCR or enzyme immunoassay. J Clin Microbiol. 2008; 46:3795-3797.
Fenner L, Widmer AF, Goy G, et al. Rapid and reliable diagnostic algorithm for detection of Clostridium difficile. J Clin Microbiol. 2008; 46(1):328-330.
Wilkins TD, Lyerly DM. Clostridium difficile testing: after 20 years, still challenging. J Clin Microbiol. 2003; 41(2):531-534.
Bartlett JG. Clinical practice. Antibiotic-associated diarrhea. N Engl J Med. 2002; 346(5):334-339.
Jacobs DS, DeMott WR, Oxley DK. Jacobs & DeMott laboratory test handbook with key word Index. 5th ed. Hudson: Lexi-Comp Inc., 2001.