Exame Parasitológico de Fezes

Introdução

É um exame que, através da microscopia óptica, é capaz de identificar a presença (ou não) de protozoários (trofozoítas, cistos ou oocistos) e de helmintos (ovos, larvas ou mesmo vermes intactos ou frações destes) eliminados nas fezes, por meio de diferentes técnicas de preparo do material.

Apesar de ter alta especificidade, é um exame que apresenta baixa sensibilidade. O exame com três amostras de fezes frescas, analisadas a cada coleta, preferencialmente em dias alternados (ou com intervalo de pelo menos 24 horas entre as coletas), é considerado o ideal para uma avaliação adequada, otimizando assim a sua sensibilidade.

O uso de soluções conservadoras (ex.: Formol) pode ser feito para o armazenamento, em conjunto, de porções de fezes obtidas com intervalo de, no mínimo, 24 horas entre as coletas.

A sensibilidade do exame parasitológico de fezes varia de acordo com a qualidade da coleta do material, parasita envolvido, método(s) de concentração empregado(s), coloração utilizada e experiência do microscopista (método examinador dependente).

Em casos negativos, porém com alta suspeita clínica, podem ser solicitados testes para detecção de antígeno, anticorpo e/ou de diagnóstico molecular de alguns parasitas. Alguns exemplos desses ensaios disponíveis comercialmente são: protozooses (ex.: amebíase, babesiose, criptosporidiose, giardíase) e helmintoses (ex.: toxocariose, estrongiloidose, esquistossomose).

Solicitação

Indicações:

Na triagem, avaliação e monitoramento do tratamento de patologias causadas por protozoários e helmintos;
Útil na pesquisa de estrongiloidíase antes do começo de corticoterapia imunossupressora.

Como solicitar: Exame parasitológico de fezes (EPF) ou Pesquisa de ovos e protozoários (POP) - Fezes.

Orientações de Coleta

Orientações ao paciente:
- Não devem ser coletadas por até 1 semana depois de o paciente ter ingerido qualquer material que possa deixar algum resíduo cristalino (antidiarreicos não absorvíveis, antiácidos, bismuto, óleo mineral, etc.). O emprego de antibióticos ou meios de contraste pode reduzir os números de parasitas, principalmente de protozoários; [cms-watermark]
- Lavar as mãos antes e depois da coleta;
- Defecar em vasilhame limpo e seco, e transferir para o frasco próprio fornecido pelo laboratório (coletar frações de fezes em diferentes partes do bolo fecal);
- Não contaminar a amostra com urina, água ou solo;
- Manter a amostra armazenada e refrigerada até a sua entrega ao laboratório, a qual deve ser realizada em, no máximo, 2 horas após a coleta.
Frasco coletor de fezes (figura 1): Após a coleta, manter o material sob refrigeração (2-8 °C);
Material: Fezes recentes, frescas;
Volume recomendável: Aproximadamente metade do frasco.

Figura 1. Frasco coletor de fezes. Ilustração: Caio Lima

Valores de Referência

Ausência de protozoários (trofozoítas, cistos e/ou oocistos) e de helmintos (ovos, larvas e/ou vermes intactos).

Observação! Se o exame for positivo, o laboratório clínico deverá informar o(s) parasita(s) identificado(s) e sua apresentação (ex.: cisto, ovo, larva, etc.).

Interferentes/Limitações

Contaminação da amostra com urina, água ou solo pode prejudicar a análise.

Ingestão de qualquer material que deixe resíduo cristalino (antidiarreicos não absorvíveis, antiácidos, bismuto, óleo mineral, etc.).

O uso de antibióticos, mesmo que momentaneamente, pode reduzir a carga parasitária, podendo levar a resultados falso-negativos.

Os parasitas podem apresentar eliminação fecal irregular/flutuante e, dessa forma, um único resultado negativo não exclui a possibilidade de infecção.

Não existe um método coprológico único que seja capaz de diagnosticar/identificar todas as helmintoses e protozooses. Preferencialmente, o clínico deve descrever qual a técnica desejada ou a hipótese diagnóstica.

A sensibilidade do exame parasitológico de fezes varia de acordo com a qualidade da coleta do material, parasita envolvido, método(s) de concentração empregado(s), coloração utilizada e experiência do microscopista (método examinador dependente).

Ele não detecta, de maneira rotineira, coccídios (ex.: Cryptosporidium, Cyclospora ) ou microsporídios. Nesses casos, é necessário o uso de colorações/técnicas especiais (ex.: Auramina, Kinyoun), de fluorescência, antígeno ou moleculares para a identificação desses microrganismos.

Existem diferentes técnicas que utilizam princípios diversos (ex.: sedimentação, flutuação, termo-hidrotropismo) que podem ser utilizadas para a pesquisa de protozoários e helmintos, cada qual com suas aplicações, vantagens e desvantagens.

Autoria

Autoria principal: Pedro Serrão Morales (Medicina Laboratorial e Patologia Clínica).

Referências Bibliográficas

Bialek R, Binder N, Dietz K, et al. Comparison of autofluorescence and iodine staining for detection of Isospora belli in feces. Am J Trop Med Hyg. 2002; 67(3):304-305.

De Carli GA. Parasitologia Clínica: Seleção de Métodos e Técnicas de Laboratório para o Diagnóstico das Parasitoses Humanas. São Paulo: Atheneu, 2001.

Jacobs DS, DeMott WR, Oxley DK. Jacobs & DeMott Laboratory Test Handbook With Key Word Index. 5th ed. Hudson: Lexi-Comp Inc., 2001.

Kanaan S. Laboratório com interpretações clínicas. 1a ed. Rio de Janeiro: Atheneu, 2019.

Lefaure B, Kebbabi C, Monnin N. Evaluation of a Flotation Adapted Parasep® for Stool Ova and Parasite Examination. J Parasitol. 2019; 105(3):480-483.

McPherson RA, Pincus MR. Henry's Clinical Diagnosis and Management by Laboratory Methods. 23rd ed. St. Louis: Elsevier, 2017.

Shane AL, Mody RK, Crump JA, et al. 2017 Infectious Diseases Society of America Clinical Practice Guidelines for the Diagnosis and Management of Infectious Diarrhea. Clin Infect Dis. 2017; 65(12):e45-e80.

Ribes JA, Seabolt JP, Overman SB. Point prevalence of Cryptosporidium, Cyclospora, and Isospora infections in patients being evaluated for diarrhea. Am J Clin Pathol. 2004; 122(1):28-32.

Riddle MS, DuPont HL, Connor BA. ACG Clinical Guideline: Diagnosis, Treatment, and Prevention of Acute Diarrheal Infections in Adults. Am J Gastroenterol. 2016; 111(5):602-622.