Hormônio do Crescimento (GH)
Definição: Hormônio peptídico secretado pela hipófise anterior (adeno-hipófise) de forma pulsátil. Dentre outras funções fisiológicas, o hormônio do crescimento (GH) estimula tanto a glicogenólise quanto a gliconeogênese, aumenta a lipólise e antagoniza a captação da glicose estimulada pela insulina.
Sinônimos:
GH; GH basal; HGH; hGH; Hormônio Somatotrófico; Somatotrofina; Hormônio do Crescimento Humano; GH Sérico; GH - Sangue.
O GH é, estruturalmente, semelhante à prolactina e ao hormônio lactogênio placentário humano.
Sua liberação é influenciada por, basicamente, três fatores hipotalâmicos: hormônio liberador do GH, peptídeo-6 liberador do GH e do hormônio inibidor do GH ou somatostatina.
Exercícios, ingesta proteica, hipoglicemia e sono profundo também são fatores estimulantes de sua secreção pela adeno-hipófise.
O GH apresenta maior concentração durante as primeiras horas do sono, com uma meia-vida no sangue de aproximadamente 20 minutos. Ele é um potente agente estimulador do crescimento na infância/adolescência.
Na infância, a deficiência de GH pode se manifestar clinicamente com baixa estatura; e o aumento de sua produção pode resultar em gigantismo.
Nos adultos, apresenta influência em vários efeitos fisiológicos, direta ou indiretamente (pelo fator de crescimento semelhante à insulina tipo 1 [IGF-1
] produzido no fígado), como na lipólise, síntese proteica, função cardíaca e muscular. Nessa população, o aumento da produção do GH manifesta-se com acromegalia.
Testes funcionais com estimulação de secreção (nos casos de suspeita de deficiência) e supressão (na suspeita de excesso de GH) são úteis e devem ser realizados para complementação diagnóstica.
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Indicações:
- Avaliação de excesso ou deficiência do GH;
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Monitoramento do tratamento com GH;
- Avaliação no contexto do doping no esporte.
Como solicitar:
GH Basal.
- Orientações ao paciente: Jejum de 8 horas;
- Tubo para soro (tampa vermelha/amarela). Aguardar a devida retração do coágulo, centrifugar a amostra, separar o soro em um tubo de plástico estéril e congelar (-20°C) imediatamente;
- Material: Sangue;
- Volume recomendável: 1 mL.
Figura 1.
Tubo para soro - tampa vermelha -
Ilustração:
Caio Lima.
Figura 2.
Tubo para soro - tampa amarela -
Ilustração:
Caio Lima.
- Recém-nascidos: 5 a 53 ng/mL;
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Crianças (1 a 12 anos):
2 a 10 ng/mL;
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Adultos:
- Masculino: 0 a 4 ng/mL;
- Feminino: 0 a 18 ng/mL;
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Maiores de 60 anos:
- Masculino: 1 a 9 ng/mL;
- Feminino: 1 a 16 ng/mL.
Observação! Os valores de referência para o GH podem variar de acordo com o Laboratório Clínico e a metodologia utilizada.
Devido, notadamente, à sua secreção pulsátil, uma amostra isolada pode não fornecer resultados clinicamente relevantes. Provas funcionais, determinação do IGF-1 e outros exames complementares devem ser utilizados.
Os resultados obtidos em plataformas analíticas distintas podem apresentar variação considerável, muito em virtude da heterogeneidade molecular do GH.
Amostras acentuadamente hemolisadas podem interferir nos resultados.
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Aumento:
- Acromegalia;
- Exercícios;
- Jejum;
- Gigantismo;
- Hipoglicemia;
- Nanismo de Laron;
- Hepatopatias;
- Desnutrição;
- Recém-nascidos;
- Ingestão de proteínas;
- Insuficiência renal;
- Sono;
- Estresse;
- Diabetes mellitus.
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Diminuição:
- Deficiência idiopática do GH;
- Adenoma hipofisário;
- Doença hipotalâmica.
Autoria principal: Pedro Serrão Morales (Patologia Clínica e Medicina Laboratorial).
Aghili ZS, Khoshnevisan G, Mostoli R, et al. Growth hormone signaling and clinical implications: from molecular to therapeutic perspectives. Mol Biol Rep. 2025; 52(1):202.
Giustina A, Biermasz N, Casanueva FF, et al.; Acromegaly Consensus Group. Consensus on criteria for acromegaly diagnosis and remission. Pituitary. 2024; 27(1):7-22. Epub 2023 Nov 3. Erratum in: Pituitary. 2024; 27(1):88.
Clemmons DR, Bidlingmaier M. Interpreting growth hormone and IGF-I results using modern assays and reference ranges for the monitoring of treatment effectiveness in acromegaly. Front Endocrinol (Lausanne). 2023; 14:1266339.
Kanaan S, Garcia MAT, Xavier AR, eds. Bioquímica clínica. 3. ed. Rio de Janeiro, RJ: Atheneu; 2022.
Graber E, Reiter EO, Rogol AD. Human growth and growth hormone: from antiquity to the recominant age to the future. Front Endocrinol (Lausanne). 2021; 12:709936.
Lotierzo M, Olaru-Soare F, Dupuy AM, et al. Comparative study of human growth hormone measurements: impact on clinical interpretation. Clin Chem Lab Med. 2021; 60(2):191-7.
Kanaan S. Laboratório com interpretações clínicas. Rio de Janeiro, RJ: Atheneu; 2019.
Melmed S. Pathogenesis and diagnosis of growth hormone deficiency in adults. N Engl J Med. 2019; 380(26):2551-62.
McPherson RA, Pincus MR, eds. Henry's clinical diagnosis and management by laboratory methods. 23rd ed. St. Louis, MO: Elsevier; 2017.
Casagrande A, Czepielewski MA. Ensaios para a medida de hormônio do crescimento (GH) e IGF-I: aspectos metodológicos e suas implicações no diagnóstico e seguimento da acromegalia. Arq Bras Endocrinol Metab. 2007; 51(4).
Jacobs DS, DeMott WR, Oxley DK, eds. Jacobs & DeMott laboratory test handbook with key word index. 5th ed. Hudson, OH: Lexi-Comp Inc.; 2001.
Okada S, Kopchick JJ. Biological effects of growth hormone and its antagonist. Trends Mol Med. 2001; 7(3):126-32.
Camacho-Hübner C. Assessment of growth hormone status in acromegaly: what biochemical markers to measure and how? Growth Horm IGF Res. 2000; 10 (Suppl B):S125-9.